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乙醇酸氧化酶活性的测定上海液质检测平台 [复制链接]

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乙醇酸氧化酶(GO)是光呼吸代谢的关键酶,也是光下合成草酸的关键酶,它催化乙醇酸氧化生成乙醛酸,也可进一步催化乙醛酸氧化生成草酸,两个反应都伴有过氧化氢的产生。测定GO活性的方法有多种,如氟电极法、盐酸苯肼紫外分光光度法、盐酸苯肼-铁氰化钾比色法、二氯酚靛酚还原法等,但根据我们多年的研究经验,介绍两种比较精确而实用的方法。

1仪器设备

冷冻高速离心机、可见光光度计、恒温水浴、秒表。

2操作方法

2.1盐酸苯肼-铁氰化钾比色法(PlantCellPhysiol,,19:)

2.1.1酶提取:称取0.5g植物叶片,加入5mlmmol/L磷酸缓冲液(pH8.0),充分匀浆后用r/min冷冻离心15min,上清液可作为粗酶液备用。如需进一步提纯GO,请参考彭新湘和李明启(,植物生理学报,15:)。

2.1.2酶活性测定:向试管中加入0.75mlmmol/L磷酸缓冲液(pH8.0),0.1ml1mmol/LFMN,0.05ml粗酶液(可根据不同材料作适当稀释,使最后的OD读数在0.5左右为宜),摇匀后在30℃水浴中平衡10min,然后加入0.1ml50mmol/L乙醇酸启动反应(以加入0.1ml蒸馏水作空白调零)。反应5min后加入0.1ml2NHCI中止酶活性,然后加入0.1ml1.82NaOH中和其酸性,混匀后加入0.2ml0.33%盐酸苯肼(溶于0.15N盐酸中,现配现用),反应10min后在通风柜中加入1ml浓盐酸,摇匀冷却后加入0.2ml1.65%的铁氰化钾,显色20min后于nm处比色测定。

2.1.3标准曲线的制作:用mmol/L磷酸缓冲液(pH8.0)配成0、20、40、60、80、μmol/L的乙醛酸溶液,各取1ml,然后按上述步骤进行显色,绘制标准曲线。

2.2酶偶联法(Phytochem,,24:)

2.2.1酶提取同上。

2.2.22mlmmol/L磷酸缓冲液(pH8.0),0.1ml30mmol/L4-氨基安替吡啉(4-amino-antipyrine),0.1ml单位/ml辣根过氧化物酶(现配现用),0.3ml20mmol/L苯酚(现配现用),0.3ml1mmol/LFMN,0.1ml粗酶液(可适当稀释使其OD值每分钟上升0.1单位左右为宜),摇匀后在30℃恒温水浴中保温10min(水浴置于分光光度计旁),加入0.1mlmmol/L乙醇酸后摇匀后迅速倒入1cm光径的玻璃比色杯中观测nm处的吸收值的上升速率,每30s读数1次,共观测3min。

2.2.3标准曲线的制作:以标准过氧化氢代替乙醇酸,使其终浓度为20、40、60、80、μmol/L,然后在nm处比色测定,制作标准曲线。

3注意事项

3.1盐酸苯肼-铁氰化钾比色法(PlantCellPhysicl,,)尤其适合于大量样品的分析测定,并且其结果易于肉眼判断,重复性较好。但因本法的原理是测定乙醛酸的生成量,如形成的乙醛酸继续被氧化生成草酸,可能会使测定值偏低。然而GO对乙醛酸的亲和力大大低于乙醇酸,其Km值一般是乙醇酸的30倍,所以只要反应时间足够地短(一般反应5min便中止反应),可基本保证测定的准确性。

3.2酶偶联法(Pbytochem,,24:)是利用过氧化物酶及其底物与产生的H2O2反应后生成有色产物来确立GO催化反应的速率。由反应式CH2OH-COOH+O2=CHO-COOH+H2O2)可知,产生多少摩尔H2O2也就生成了多少摩尔的乙醛酸。此法的优点是灵敏、不易受色素干扰,重复性好,结果也易肉眼判断。但此法可能会受粗酶液中的过氧化氢酶活性的干扰使结果偏低,但只要加入足量过氧化物酶(一般每管3~5单位即可),酶浓度不太高的情况下,这种误差可忽略不计。

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